非洲猪瘟病毒检测试剂盒(荧光定量PCR法)
(仅供科研使用)
1. 【产品名称】
通用名称:非洲猪瘟病毒检测试剂盒(荧光定量PCR法)
2. 【预期用途】
本产品用于血清、血浆、口鼻拭子、组织样(脾、肺、淋巴结等)、环境样等样本中定性检测病毒核酸。
3. 【检测原理】
本试剂盒以非洲猪瘟病毒基因组的相对保守区作为检测靶区域,设计特异性引物和特异Taqman探针,保证试剂盒的检测灵敏度和精确度。在PCR反应体系中引入UNG酶+dUTP措施,有效的降解扩增产物气溶胶污染,避免假阳性。
4. 【产品组成】 50 T/盒
组分 | 规格 |
PCR反应液 | 650μL×1管 |
引物混合液 | 380μL×1管 |
阳性对照 | 250μL×1管 |
阴性对照 | 250μL×1管 |
5. 【适用仪器】
核酸扩增仪:TL Gentier 96E、TL Gentier 48E、杭州博日FQD-96A、上海宏石SLAN96、ABI7500、ABI7300 plus、QuantStudio 3、QuantStudio 5、Biorad CFX-96等荧光定量PCR仪。
6. 【样本准备】
1、适用样本类型:血清、血浆、口鼻拭子、组织样(脾、肺,淋巴结等)、环境样。
2、样品采集
(1)血清:用一次性无菌注射器采取5 mL静脉血,收集于无菌离心管中,室温放置不超过4h,待样本自行析出血清,或直接1600 rpm离心5min,吸取上清(注意勿吸入红细胞)转入无菌离心管中备用。
(2)血浆:用一次性无菌注射器采取5mL静脉血于含有EDTA或枸橼酸钠作为抗凝剂的无菌离心管中,立即轻轻颠倒混匀,室温放置不超过4h,待样本自行析出血浆,或直接1600 rpm离心5min,吸取上清转入无菌离心管中备用。
(3)鼻拭子:将带有聚丙烯纤维头拭子轻轻插入鼻道内,停留片刻后缓慢转动退出,将拭子头浸入采样液中,尾部弃去。
(4)口拭子:将带有聚丙烯纤维头拭子给动物咀嚼,将拭子头浸入采样液中,尾部弃去。
(5)组织样:解剖,无菌采集的脾、肺、肾、扁桃体、淋巴结等组织样品。
(6)环境样:收集与病猪相关场所的粪便、饲料、污水样品。
3、样本存放和运送:
待测样本在2~8℃保存不应超过48h;-20±5℃保存不超过5个月;-70℃以下长期保存,应避免反复多次冻融。 样本运输应采用泡沫盒加冰袋密封运输。
4、样品处理方法
(1)血浆、血清、口鼻拭子、污水样:置于60℃条件下灭活30min后进行核酸提取。
(2)脾、肺、肾等组织样:取适当大小的组织块放入盛有PBS缓冲液的研磨管中,70 Hz震荡研磨60s,制成约10%的组织匀浆液,5000 rpm离心5min,置于60℃条件下灭活30min后,取上清液进行核酸提取。
(3)粪便、饲料样:取适量的粪便、饲料放入盛有PBS缓冲液的研磨管中,70 Hz震荡研磨60s,制成约10%的匀浆液,5000 rpm离心5min,置于60℃条件下灭活30min后取上清液进行核酸提取。
7. 【操作步骤】
注:阳性对照和阴性对照不需要进行核酸提取!
1、试剂准备(试剂准备区)
取出试剂盒中的各组分,室温放置,待其温度平衡至室温后,充分融化混匀并瞬时离心以去除管壁附着液体;取N个(N=待测样本数量+阴性对照+阳性对照+误差预留量)PCR反应管,根据下表配制扩增体系。
组分 | PCR反应液 | 引物混合液 | |
用量 | 12.5μL/份*N | 7.5 μL/份*N |
在无菌离心管中加入上述试剂,充分混匀后瞬时离心,按照20 μL/管分装量将试剂分装至PCR反应管,盖上盖子瞬时离心并转移至样本处理区备用。
2、样本提取(样本处理区)
将待测样品进行核酸提取,具体操作按照核酸提取试剂盒说明书操作。
3、 加样(样本处理区)
向含有PCR反应液的反应管中(PCR反应管需置于冷冻冰盒上),分别加入提取的待测样本、阴性对照、阳性对照各5μL,盖紧管盖轻轻混合,瞬时离心后将PCR反应管转移至检测区。
4、PCR扩增(检测区)
(1)取样本处理区准备好的PCR反应管,放置在实时荧光定量PCR仪样品槽相应位置,并记录放置顺序。
(2)按下表设置仪器核酸扩增相关参数进行PCR扩增,FAM通道采集荧光信号,设置循环条件如下:
步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 | |
1 | UNG酶反应 | 50℃ | 2min | 1 |
2 | Taq酶活化 | 95℃ | 3min | 1 |
3 | 变性 | 95℃ | 10s | 45 |
退火,延伸,荧光采集 | 60℃ | 30s |
设置完成后,保存文件,运行程序。
8. 【质量控制】
试剂盒提供阳性对照和阴性对照,同一次实验必须同时满足下表要求,否则,实验无效,需重新进行。
对照 | 检测通道 | 正常结果(Ct值) |
阴性对照 | FAM | 无典型S型曲线,无Ct值 |
阳性对照 | FAM | 具有典型S型曲线,Ct值<42 |
9. 【阳性判断值】
检测通道 | 阳性判断值 |
FAM | Ct<42 |
10. 【检验结果的解释】
(1)阴性:检测结果无Ct值;
(2)阳性:扩增曲线呈典型S型且Ct≤42;
(3)不确定:扩增曲线呈典型S型且42<Ct<45,判定为不确定样本,需重新提取核酸后进行检测,若复检样本扩增曲线呈典型S型且42<Ct<45,判定为核酸阳性,否则判定为阴性。
(5)结果判读:待测样本的靶基因的检测结果为阳性,同时阳性对照和阴性对照符合上述标准,即可判断为病毒核酸检测为阳性。
11. 【检测方法的局限性】
(1)本试剂盒仅供科研使用,使用前请详细阅读说明书;
(2)本试剂盒仅用于辅助诊断,不作为诊断检测的唯一依据,应结合病猪的发病症状/体征、病史、其他实验室检查及治疗反应等情况综合考虑;
(2)有关假阴性结果的可能性分析
样本检测结果与样本收集、处理、运送及保存质量有关,其中任何失误都将会导致结果不准确。如果样本处理时没有控制好交叉污染,可能出现假阳性结果。
12. 【注意事项】
(1)本试剂盒仅用于科研使用,使用前请仔细阅读本说明书。
(2)试验前请熟悉和掌握需使用仪器的操作方法和注意事项,对每次实验进行质量控制。
(3)实验室管理应严格按照PCR基因扩增实验室的管理规范,实验人员必须进行专业培训;实验过程严格分区进行,所用消耗品应灭菌后一次性使用,实验操作的每个阶段使用专用的仪器和设备,各区各阶段用品不能交叉使用。
(4)所有检测样品应视为具有传染性物质,实验过程中穿工作服,戴一次性手套并经常替换手套以及避免样品间的交叉污染;样本操作、废弃物处理均需符合相关法规要求。
(5)所有的试剂在使用前,均需在室温下充分融化、混匀后使用。
(6)实验中用过的枪头请直接打入盛有10%次氯酸钠的废物缸内,并与其他废弃物品一同丢弃。工作台及各种实验用物品经常用10%次氯酸钠、75%酒精和紫外灯进行消毒。
13. 【储存条件】 -20℃ 1年。